УДК 581.1
ТЕРМОПАРНЫЙ ПСИХРОМЕТР
ДЛЯ ИЗМЕРЕНИЯ ВОДНОГО ПОТЕНЦИАЛА РАСТИТЕЛЬНЫХ ТКАНЕЙ ИЗОПИЕСТИЧЕСКИМ МЕТОДОМ
© 2010 г. А. А. Котов, Л. М. Котова
Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук, Москва
Поступила в редакцию 31.08.2009 г.
Описано устройство термопарного психрометра для проведения измерений в биологических объектах водного потенциала (ψw) и его компонентов: матрично-осмотического потенциала (ψs+m) и тургорного давления (ψp). Прибор позволяет использовать изопиестический метод, при котором не требуется предварительная скарификация материала для устранения влияния сопротивления диффузии водных паров кутикулярного покрова. Предложенная конструкция сменных плунжеров, несущих термопары, обеспечивает простоту и надежность их эксплуатации. Модификация крышки термопарной камеры и использование криодержателя исключает необходимость извлечения пробы из камеры после измерения ψw для ее замораживания в жидком азоте и оттаивания перед измерением ψs+m. Данная особенность увеличивает точность определения ψp, вычисляемого как ψw – ψs+m, а также позволяет использовать минимальные количества растительного материала, проводя измерения всех трех компонентов ψw, ψs+m, ψp в одной пробе.
------------------------------------------
Сокращения: термоэдс – термоэлектродвижущая сила; Tc1 и Tc2 – первый и второй растворы, наносимые на сенсорный спай термопары с разными осмотическими потенциалами ψsTc1 и ψsTc2; Udry Tc – термоэдс "сухой" термопары без раствора; UTc – термоэдс, генерируемая термопарой с раствором, имеющим осмотический потенциал ψsTc; ψsTc – осмотический потенциал наносимого на термопару раствора; ψsTc(iso) – осмотический потенциал изопиестической точки; ψp – тургорное давление; ψs – осмотический потенциал; ψs+m – комбинированный осмотический и матричный потенциал; ψw – водный потенциал.
Адрес для корреспонденции: Котов Андрей Александрович. 127276 Москва, Ботаническая ул., 35. Институт физиологии растений РАН. Факс: 007 (495) 977-80-18; электронная почта: kotov_andrei-62@mail.ru

Ключевые слова: растение – изопиестический метод – термопара – психрометр – водный потенциал – осмотический потенциал – тургорное давление

ВВЕДЕНИЕ
    
     Определение водного потенциала (ψw) объекта с помощью термопарного психрометра основано на измерении термоэлектродвижущей силы (термоэдс), возникающей в результате охлаждения или нагрева капли воды или растворов с различными значениями ψw на сенсорном контакте (спае) термопары при испарении водных паров с нее или конденсации водных паров на нее из расположенного вблизи тестируемого образца. Стационарное значение температуры сенсорного контакта, а значит и выходное термоэдс, является результатом установления динамического равновесия между интенсивностью притока/оттока тепла за счет переносимых к датчику водяных паров и скоростью диссипации этого тепла на самом датчике в силу его теплопроводности [1; 2, с. 11]. Поскольку поток паров между объектом и раствором на термопаре находится в прямой зависимости от разницы их ψw, и в обратной – от сопротивления диффузии водяного пара поверхности объекта, в случае калибровки психрометра по свободно испаряющим растворам результаты оценки ψw растительных органов, обладающих кутикулой, могут быть некорректны. Предварительная скарификация материала способна частично устранить ошибку подобного рода, однако другим решением является изопиестический подход, впервые примененный в термопарной психрометрии растительных органов [1]. Основой такого приема служит проведение для одного и того же образца как минимум двух последовательных измерений термоэдс термопарой при смене на ее сенсорном спае растворов с разными осмотическими потенциалами (ψs), что позволяет вычислить ψs "изопиестической точки" [1], численно равный ψw пробы, в которой не происходит обмена водными парами между образцом и каплей в термопаре, т.е. термоэдс равен нулю.
     Поскольку психрометры, выпускаемые промышленностью, не позволяют в ходе работы с одним образцом проводить быструю смену термопар с заменой раствора на ее термочувствительном спае, основой изготовленного и описанного в настоящей работе устройства является термопарный психрометр [3], модифицированный Boyer [1], в конструкцию которого нами внесен ряд изменений и дополнений. Во-первых, плунжер был снабжен неэлектризуемым подвижным колпачком, защищающим термопару, что делает процесс смены термопары во время тестирования образца простым и быстрым. Второй особенностью являлась модификация крышки термопарной камеры, которая позволяет герметично монтировать камеру, как на баррель, так и на сконструированный нами криодержатель. Это позволяет не перемещать образец из камеры и обратно при замораживании материала в жидком азоте и оттаивании перед определением его осмотического потенциала, включающего в себя матричную компоненту (ψs+m) и тем самым способствует корректной работе с минимальным количеством материала. Данная модификация увеличивает точность измерения тургорного давления (ψp), определяемого по разнице ψw живого материала и ψs+m, который измеряют после криогенной обработки материала [4].
    
ОПИСАНИЕ УСТРОЙСТВА ТЕРМОПАРНОГО ПСИХРОМЕТРА
    
     Термопарный психрометр представляет собой установку, состоящую из 4 блоков (рис. 1): несколько (до восьми) измерительных ячеек с тестируемыми образцами и погруженными в них на время измерения сменными термопарами (Блок А) расположены в термоизолированном боксе (Блок Б), выходные электрические кабели термопар вложены в специальные узкие прорези в стенке термобокса и далее через кнопочный переключатель (Блок В) соединены с измерительным прибором (Блок Г). Минимальный используемый измерительный диапазон нановольтамперметра Р341 составлял ±1мкВ с ценой деления 20 нВ.
     Измерительная ячейка (рис. 1, блок А) состоит из барреля (1) с привинченной к нему термопарной камерой (2) с крышкой (3), в которой размещен растительный материал (4), и вставленного в баррель плунжера (5) с термопарой (6), погруженной в камеру. Латунно-пластиковый баррель представляет собой полый цилиндр, к нижней латунной части (1а) которого прикреплена латунная камера (2) с тестируемыми образцами (4). Камера надежно защищена от проникновения термостатирующей воды благодаря крепежному распорному силиконовому кольцу крышек (3б), а гидрогерметичность внутренней полости барреля обеспечена применением резьбового соединения между баррелем (1) и крышкой (3), плотно зажимающего водонепроницаемую фторопластовую прокладку (3а) между торцевой стороной стенки барреля и фланцем крышки. В зависимости от величины и количества тестируемого растительного материала использовали термопарную камеру меньшего или большего размера – диаметром 10 мм и высотой 12 мм или диаметром 14 мм и высотой 14 мм, привинчивая к баррелю крышки соответствующего типа. В баррель погружен плунжер (5) – латунно-пластиковый стержень, на нижней латунной части (5а) которого находится хромель-копелевая термопара (6а), сенсорный (6б) и опорные (6в) спаи которой проникают внутрь камеры с тестируемым материалом через узкое сквозное отверстие (диаметр 3 мм) в ее крышке (3). Латунная часть плунжера (5а) при этом герметично закрывает отверстие крышки камеры. Обе латунные части плунжера (5а) и барреля (1а) выполняют роль проводника тепла для термостабилизации опорных спаев термопары (6в) – мест крепления ее хромелевой и копелевой частей к медным проводам (6г). Хромелевая и копелевая части термопары (6а) представляют собой две проволоки длиной 10 мм и диаметром 50 мкм, место контакта их друг с другом является термочувствительной точкой (сенсорный спай, 6б) и, согласно конструкции Richards [3], выполнено в форме серебряного цилиндра (диаметр 1.5 мм, высота 0.5 мм, толщина 80 мкм), к которому с обеих сторон припаяны ветви термопары. Серебряный цилиндр служит местом размещения раствора с известным ψs, который благодаря силам поверхностного натяжения удерживается в нем в форме сферической капли, а ее диаметр определяется внутренним диаметром цилиндра. Сферические капли стандартного объема (1.8 мкл) на сенсорном спае термопары получали погружением термопары в раствор с быстрым последующим извлечением из него (метод сдергивания) [3]. Испарение или конденсация водных паров в капле изменяют температуру сенсорного спая относительно опорных, создавая тем самым термоэдс в цепи термопары, измеряемую нановольтамперметром [5, с. 339; 6, с. 142]. Использованные нами хромель-копелевые термопары являются одними из наиболее чувствительных типов термопар с показателем еU//T равным 69 мкВ/°С, тогда как константан-хромель – 56 мкВ/°С, а константан-медь – 41 мкВ/°С [5, с. 403; 7, с. 27].
     Верхние полипропиленовые половины барреля (1б) и плунжера (5б) дополнительно термоизолируют латунные части, позволяя опускать их до середины водяного бокса. Плунжер наполовину закрыт внешним подвижным полипропиленовым колпачком (5в), способным скользить вдоль него. Он предохраняет термопару во время ее движения в барреле, центрируя ход плунжера. Для снятия эффекта электризации при движении колпачка внешние и внутренние полипропиленовые поверхности плунжера и барреля, соответственно, экранированы тонкой алюминиевой фольгой, соединенной с общей системой заземления. Экран барреля соединен с водной средой заземленного термобокса (1в), экран плунжера соединен с заземленным экраном проводов термопары (6ж). Изолированные медные провода (диаметр 0.15 мм) присоединены к опорным спаям термопары и проходят внутри плунжера, попарно перевиты и заключены на всем протяжении до штекера (6е) в заземленную экранирующую оболочку (6ж), что защищает сигнал термопары от наведенных и статических электропомех. С целью избегания образования паразитных термоэдс провода термопары плотно соединены со стержнями штекера без припаивания. Для предотвращения окисления контактные концы медных стержней штекеров (6е) имеют гальваническое серебряное покрытие, поскольку сочетание медь-серебро, в отличие от сочетания меди с золотом или родием, имеет минимальную термоэдс [5].
     Местом проведения психрометрического измерения проб является термоизолирующий пенополистироловый бокс с внешними габаритами 330 × 330 × 330 мм (рис. 1, Блок Б, 7), и защищающий измерительные ячейки от температурных флуктуаций окружающей среды, которые должны быть снижены до ±5 × 10−4°С [3]. Контейнер заполнен на 2/3 водой, налитой в металлический эмалированный сосуд (8), и снабжен минимешалкой (9) для устранения вертикального температурного градиента, характерного для водных сред.
     Конструкция установки рассчитана на одновременное использование 8 измерительных ячеек, размещаемых в общем термобоксе (рис. 1, Блок Б). Термопары соединяли с измерительным блоком через переключатель (рис. 1, Блок В). Штекеры термопар фиксировали в гнездах штекеродержателя (на рисунке не показан), изготовленного из оргстекла и закрепленного на внешней алюминиевой панели переключателя (11). Для удобной многоканальной коммутации с фиксацией включенной кнопки (12) при взаимном выключении других была использована механическая система модульного переключателя (тип ПКн63), которая управляла соединением гибких пластин (13), специально изготовленных из листовой меди и снабженных серебряными контактами, со стержнями штекеров. Для снижения возникновения паразитных термоэдс переключатель с измерительным прибором соединяли медными нелужеными проводами. Установку нулевого значения нановольтамперметра в режиме измерения напряжения U (термоэдс) проводили включением в измерительную цепь короткозамкнутого штекера "0" (14). К алюминиевой панели переключателя были подключены провода заземления термобокса (рис. 1, Блок Б, 10), экранов термопарных кабелей (рис. 1, Блок А, 6ж) и экрана кабеля переключателя (рис. 1, Блок В, 15), соединяющего его с измерительным прибором – нановольтамперметром Р341 с блоком фотоусилителя Ф 127/1 (Россия, рис. 1, Блок Г), клемма заземления которого уже непосредственно была связана с медной пластиной, врытой в землю.
ПОДГОТОВКА РАСТИТЕЛЬНЫХ ПРОБ И ПРОВЕДЕНИЕ ИЗМЕРЕНИЙ
     
      Для корректного определения "изопиестической точки" важное значение имеет качество гидрофобного покрытия камеры, которое экранирует возможные паразитные водоадсорбирующие центры на поверхности металла камеры и не должно содержать гидрофильных примесей [1]. Из тестированных нами смазок наиболее подходящим являлся высокоочищенный бескислотный медицинский вазелин с концентрацией зольных элементов менее 0.002% (глазной; ОДО "АКСО", Беларусь) и Apiezon “N” ("Serva", Германия).
     Перед сбором проб предварительно промытую хлороформом термопарную камеру покрывали изнутри тонким слоем вазелина, для чего ее нагревали выше температуры плавления вазелина (~80°C), затем переворачивали с расплавленным вазелином вверх дном на фильтровальную бумагу для его равномерного распределения по стенкам камеры и вытекания излишков. После остывания камеру переворачивали и вновь нагревали, удаляли шприцем с тонким полиэтиленовым капилляром остатки жидкого вазелина с краев дна камеры, вновь переворачивали вверх дном и давали остыть до комнатной температуры. Для того, чтобы кусочки тканей падали на дно камеры, а не прилипали к стенкам, использовали временные крышки из алюминиевой фольги (рис. 2а, 2), которые не смазывали вазелином, поскольку их применяли только во время сбора проб, а не измерений. Камеры (рис. 2а, 1) после покрытия вазелином накрывали этими крышками с отверстием (диаметр 2 мм) для сбора материала и до взятия проб хранили в индивидуальном герметичном контейнере: два донышка от полистироловых чашек Петри диаметром 4 см, скрепленных вместе пленкой Parafilm (рис. 2а, 3). Латунные крышки камер также предварительно нагревали и изнутри покрывали вазелином, после остывания ввинчивали снизу в латунную часть баррелей (рис. 2б). Комплексы баррель–крышка сверху закрывали полипропиленовыми колпачками (рис. 2б, 8) и до использования хранили вертикально подвешенными внутри стеклянных пробирок (рис. 2б, 9) в штативе. Аналогичным способом в пробирках хранили плунжеры с термопарами и латунные заглушки (рис. 2в), предназначенные для герметизации камер до и после ввода в них термопар. Погружаемые в баррель заглушки, к нижней площадке которых приклеена мягкая полиэфирная прокладка (рис. 2в, 12) и покрытые тонким слоем вазелина, плотно закрывали отверстие крышки камеры.
     Сбор материала в термопарные камеры проводили при влажности, близкой к 100% в полиэтиленовом боксе с рукавами для рук. Бокс, изнутри выложенный влажной фильтровальной бумагой до половины высоты, с размещенными в нем необходимыми при сборе проб инструментами и оборудованием: термопарными камерами в герметичных контейнерах (рис. 2а, 3), штативом с баррелями и привинченными к ним крышками камер (рис. 2б), латунными заглушками (рис. 2в) и др., оставляли закрытым на ночь для насыщения водными парами. Опытные растения в необходимом количестве вносили в бокс через рукава для рук за 1−2 ч до взятия проб. Высекаемые из растений кусочки органов помещали внутрь камеры через отверстие временной алюминиевой крышки, предназначенной для аккуратного попадания их на дно камеры, в количестве, достаточном для покрытия дна. Затем временную крышку снимали, равномерно распределяли материал стеклянной палочкой по дну и камеру закрывали латунной крышкой с привинченным баррелем. У барреля сверху снимали полипропиленовый колпачок и закрывали отверстие в крышке камеры латунной заглушкой, поместив ее внутрь барреля (рис. 2г). После окончания сбора проб всей опытной партии их переносили в водный термобокс.
      Время пребывания камеры в боксе, необходимое для ее термостабилизации и насыщения воздуха камеры водными парами пробы, было подобрано на модельной системе, в которой в качестве объекта использовали смоченный дистиллированной водой диск фильтровальной бумаги. В этом случае выход на плато термоэдс происходил после 5 ч инкубации. Такой же инкубационный период был использован перед психрометрическим определением ψw и ψs+m растительных проб, которое проводили с помощью термопар, несущих на сенсорном спае каплю дистиллированной воды (ψs = 0) или один из растворов сахарозы с ψs = 0.295 МПа (0.11 М), 0.594 МПа (0.22 М) или 0.912 МПа (0.33 М). Для учета влияния тепла, исходящего от живого объекта и нагревающего сенсорный спай термопары, термоэдс температурного фона материала оценивали "сухой" термопарой без раствора (Udry Tc). Udry Tc измеряли только перед определением ψw, погружая за полтора часа до его начала на 30 мин "сухие" термопары в камеры с пробами.
     После 5 ч инкубации проб в термобоксе определение ψw проводили, вводя на 20 мин в камеры с материалом термопары, несущие раствор с ψsTc1, а затем через 1 ч после их извлечения термопары вводили повторно, заменив раствор на сенсорных спаях на раствор с ψsTc2. Замену латунной заглушки на плунжер с термопарой и наоборот осуществляли за 1−2 с. Измерение термоэдс (UTc1 и UTc2, мкВ) проводили в конце 20 мин пребывания термопар в камерах, последовательно подключая кнопочным переключателем выходы с термопар к измерительной цепи нановольамперметра. Среднее время измерения термоэдс 8 проб составляло 10 мин. После извлечения из камеры термопары со вторым раствором (Tc2) в баррель погружали другую специальную (криоустойчивую) полипропиленовую заглушку, предназначенную для замораживания проб (рис. 2ж, 19), наконечник которой (рис. 2ж, 20) входил в отверстие крышки термопарной камеры и плотно его герметизировал.
     Расчеты значения ψw (МПа) по результатам измерений термоэдс (мкВ) проводили нахождением изопиестической точки с ψsTc(iso) = ψw, условием которой является равенство Udry Tc = aψsTc(iso) + b, где a и b – коэффициенты линейной зависимости между ψsTc раствора на термопаре и термоэдс UTc = aψsTc + b [1]. Значения a и b для каждой пробы находили решением системы двух уравнений с использованием измеренных UTc1 и UTc2 и известных ψsTc1 и ψsTc2:
UtTc1 = aψsTc1 + b,
UtTc2 = aψsTc2 + b,
где
a = (UtTc1 – UtTc2)/(ψsTc1 – ψsTc2),
b = UtTc1 – ψsTc1 [(UtTc1 – UtTc2)/(ψsTc1 – ψsTc2)]
и, окончательно, ψw = ψsTc(iso) = (Udry Tc/a) – b/a.
     После проведения измерений, необходимых для вычисления ψw, пробы подготавливали для определения ψs+m. Баррели с камерами извлекали из водного термобокса, промокали снаружи фильтровальной бумагой и камеры с материалом без разгерметизации переносили на держатель для криообработки проб, для чего крышку с камерой и полипропиленовой заглушкой вывинчивали из барреля (рис. 2ж) и ввинчивали в нижнее кольцо специально сконструированного криодержателя (рис. 2ж, 21). Место вхождения наконечника заглушки в отверстие крышки смазывали дополнительно вазелином для полной герметичности при погружении в жидкий азот. Полипропиленовая заглушка закреплялась на держателе пластиковой втулкой (рис. 2ж, 23), скользящей по направляющим стержням держателя (рис. 2ж, 24) с пружинными фиксаторами (рис. 2ж, 25). Герметичность соединения камеры с крышкой в жидком азоте обеспечивала криостойкая О-образная силиконовая прокладка крышки (рис. 1, Блок А, 3б), используемая в плужерах медицинских шприцов типа Record на 1 мл ("Chirana", Венгрия). Для надежности удержания крышки на камере во время криообработки дно камеры дополнительно фиксировали проводами, закрепляя их на нижней части держателя (рис. 2ж, 26). Пробы замораживали, погрузив термопарную камеру до уровня крышки на 2 мин в жидкий азот (до прекращения кипения азота вокруг), и до измерения ψs+m хранили при −20°С.
     Перед измерением ψs+m пробы в камере размораживали при комнатной температуре ~1 ч, камеру вывинчивали из держателя и привинчивали к баррелю, быстро заменяли полипропиленовую заглушку крышки камеры на латунную и переносили в термобокс. Аналогично процедуре измерения ψw, после 5 ч инкубации проводили измерение ψs+m убитого замораживанием материала, но без оценки его фоновой теплоотдачи "сухой" термопарой, приняв Udry Tc = 0. По разнице потенциалов, полученных для живой и убитой пробы, вычисляли величину клеточного тургора ψp = ψw – ψs+m.
      Авторы выражают благодарность М.Д. Дулькис, генеральному директору ОАО "Московская фармацевтическая фабрика", за высокоочищенный медицинский вазелин; А.В. Егорову, токарю ремонтно-механической мастерской ИФР РАН, за изготовление латунных компонентов психрометра; А.К. Николаеву, ОАО "Институт цветметобработки", за хромелевую и копелевую проволоки, а также сотрудникам отдела гальваники Радиотехнического института РАН за консультации по серебрению медных контактов.

ПОДПИСИ К РИСУНКАМ
    
Рис. 1. Функциональная схема термопарного психрометра.
Блок А – измерительная ячейка для размещения термопары и тестируемого образца (слева представлена в сборе): 1 – баррель: латунная часть барреля (1а), полипропиленовая часть барреля, экранированная с внутренней поверхности алюминиевой фольгой (1б), провод, соединяющий алюминиевый экран внутри барреля с внешней водной средой термобокса (1в); 2 – латунная термопарная камера; 3 – латунная крышка термопарной камеры с фторопластовой прокладкой (3а) и силиконовым кольцом (3б); 4 – проба растительного материала; 5 –плунжер: латунная часть плунжера (5а), полипропиленовая часть плунжера, экранированная алюминиевой фольгой (5б), скользящий пластиковый защитный колпачок плунжера (5в), ручка для переноса плунжера (5г); 6 – термопара: ветви термопары (6а), сенсорный контакт (спай) термопары в форме серебряного цилиндра (6б), опорные контакты (спаи) термопары (6в), провода термопары (6г), экранированный провод термопары (6д), стержни штекера провода от термопары (6е), заземления экранов проводов термопар (6ж). Блок Б – термостатирующий бокс для размещения 8 измерительных ячеек (на схеме в качестве примера изображена одна измерительная ячейка): 7 – пенопластовая коробка с крышкой (7а), пенопропиленовыми вкладышами (7б), снабженными прорезями для проводов, и платформой из плексигласа (7в) и пенопропилена (7г) с отверстиями для баррелей и минимешалки; 8 – сосуд с водой; 9 – минимешалка; 10 –заземляющий провод сосуда с водой. Блок В – блок коммутаций и переключателя. Для удобства на схеме полностью показана электроизмерительная цепь только для одной термопары: 11 – алюминиевая панель штекеродержателя с клеммой заземления (11а); 12 – кнопка переключателя; 13 – внутренние контактные клеммы переключателя; 14 – "нулевой" короткозамкнутый штекер; 15 – заземление экрана кабеля, соединяющего переключатель с нановольтамперметром. Блок Г – измерительный блок (нановольтамперметр Р341 с усилителем Ф127/1 схематично показан общим рисунком): 16 – клеммы нановольтамперметра.

Рис. 2. Элементы и аксессуары термопарного психрометра (стрелками показана последовательность их использования).
а – подготовка термопарной камеры перед сбором проб; б – подготовка барреля; в – латунная заглушка для термопарной камеры; г – монтаж термопарной камеры к баррелю и герметизация ее латунной заглушкой; д – плунжер с термопарой; е – плунжер с термопарой, погруженный в баррель с термопарной камерой во время измерения пробы; ж – герметизация и перемещение камеры в криодержатель перед замораживанием пробы в жидком азоте: 1 – термопарная камера, покрытая изнутри вазелином; 2 – временная алюминиевая крышка камеры с отверстием для сбора материала; 3 – герметизирующий полистироловый контейнер для хранения термопарной камеры перед взятием проб (два донышка чашек Петри диаметром 4 см, скрепленные лентой Parafilm); 4 – баррель; 5 – провод, соединяющий алюминиевый экран внутри барреля с внешней водной средой термобокса; 6 – тефлоновая лента, герметизирующая место соединения верхней полипропиленовой части барреля с нижней латунной; 7 – крышка термопарной камеры, покрытая изнутри вазелином и привинчивающаяся к латунной части барреля; 8 – полипропиленовый колпачок; 9 – стеклянная пробирка; 10 – латунная часть заглушки; 11 – скользящий полипропиленовый защитно-направляющий колпачок; 12 –полиэфирная прокладка (скотч), наклеенная на тонкий поролон, для герметизации отверстия крышки камеры; 13 – термопара; 14 – латунная часть плунжера; 15 – полипропиленовая часть плунжера, экранированная алюминиевой фольгой; 16 – экранированные провода термопары; 17 – штекер термопары; 18 – ручка для переноса плунжера; 19 – полипропиленовая заглушка для герметизации отверстия крышки термопарной камеры при криообработке в жидком азоте; 20 – наконечник полипропиленовой заглушки; 21 – криодержатель термопарной камеры; 22 – нижнее кольцо криодержателя с резьбой; 23 – втулка, фиксирующая полипропиленовую заглушку в криодержателе; 24 – направляющие стержни криодержателя; 25 – пружинные фиксаторы; 26 – проволока дополнительного закрепления термопарной камеры в криодержателе.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
    
1. Boyer J.S., Knipling E.D. Isopiestic Technique for Leaf Water Potentials with a Thermocouple Psychrometer // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1965. V. 54. P. 1044-1051.
2. Берман Н.Р., Чабан В.Г. Нестационарный теплообмен в термопарном психрометре Пельтье // Численные исследования в механике сплошных сред / Сб. науч. тр. Математические исследования. Кишинев: Штиинца, 1987. № 94. С. 11-18.
3. Richards L.A., Ogata G. Thermocouple for Vapor Pressure Measurement in Biological and Soil Systems at High Humidity // Science. 1958. V. 128. P. 1089-1090.
4. Nonami H., Boyer J.S., Steudle E.S. Pressure Probe and Isopiestic Psychrometer Measure Similar Turgor // Plant Physiol. 1987. V. 83. P. 592-595.
5. Эберт Г. Краткий справочник по физике. М.: Физматгиз, 1963. 553 с.
6. Кошкин Н.И., Ширкевич М.Г. Справочник по элементарной физике. М.: Наука, 1972. 256 с.
7. Глазов Б.В. Монтаж и наладка средств контроля температуры. М.: Энергия, 1978. 88 с.